貼壁細胞在培養(yǎng)時要貼附于培養(yǎng)(瓶)器皿壁上,細胞一經(jīng)貼壁就迅速鋪展,然后開始有絲分裂,并很快進入對數(shù)生長期。
傳代后細胞全部飄起
解決方法:檢查所使用的培養(yǎng)基的顏色是否偏紫色(如圖1),檢查瓶蓋是否透氣,不透氣瓶蓋是否被擰松。
圖1. 培養(yǎng)基顏色偏紫
通常培養(yǎng)基偏堿,顏色就會偏紫,主要是因為培養(yǎng)基里的酚紅指示劑遇酸變黃、遇堿變紫,培養(yǎng)基量太少,或培養(yǎng)基存放時間太長時都會變堿。建議配好完-全培養(yǎng)基后分裝到50mL離心管并于一周內(nèi)用完,量少時放到15mL離心管里保存。
傳代后部分細胞漂浮
原因及解決方法如下
傳代前細胞密度太大:一般細胞匯合度達到80%時可進行傳代操作,傳代密度需適中,傳代密度過高也會導(dǎo)致傳代后漂浮;
細胞狀態(tài)不好:可通過提高血清比例、穩(wěn)定培養(yǎng)環(huán)境等方法進行改善;
吹打次數(shù)過多造成機械損傷:輕柔吹打,細胞呈單顆粒時可停止吹打,吹打過程避免氣泡產(chǎn)生;
培養(yǎng)基更換后不適應(yīng):更換回原來的培養(yǎng)基;或者與原培養(yǎng)基比例混合后使用,使細胞有個適應(yīng)期。
傳代后細胞變形
原因及解決方法如下
1)變形,但細胞還在生長:可能是血清批次不一樣導(dǎo)致,血清成分復(fù)雜,不同批次和品牌間均存在成分差異,影響細胞狀態(tài)。建議使用同一批次血清,更換血清時需與原血清比例混合后使用,使細胞有過渡期;
2)變形,但細胞不長,且碎片增多:可能傳代操作過程損傷,常見于消化不當(dāng),或者潛在支原體等污染導(dǎo)致細胞病態(tài);消化時間根據(jù)每個細胞的狀態(tài)來調(diào)整,消化過度或者消化不充分均會對細胞造成影響;培養(yǎng)過程應(yīng)嚴(yán)格無菌操作,實驗環(huán)境盡量潔凈,確保細胞無外源污染。
細胞生長周期變慢,邊養(yǎng)邊漂
原因及解決方法如下
細胞傳代時密度太稀或太密:建議細胞密度達80%左右進行傳代,傳代密度適中,密度過低會延長生長周期;
傳代操作不當(dāng):根據(jù)細胞特性決定細胞消化時間,一般在顯微鏡下觀察細胞回縮變圓并有少量細胞脫落即可終止消化,難消化的細胞可分次消化,每次時間不超過5min;頻繁換液或者清洗細胞也會導(dǎo)致細胞狀態(tài)變差,常規(guī)換液時間間隔為2~3天。
傳代后細胞成團
解決方法如下
低密度接種,延長換液時間,防止細胞脫落;
使用多聚賴氨酸包被培養(yǎng)器皿,以增加細胞貼壁牢固度,降低細胞聚集成團的幾率;
重新鋪板,并更換新配制的培養(yǎng)基,加大血清比例(增加比例不超過5%);
接種時,減少培養(yǎng)基量(如T25加3mL)以加快細胞貼壁速度,等待細胞貼壁后(約8-12小時),再補加培養(yǎng)基到正常用量。
細胞出現(xiàn)空泡
原因及解決方法如下
1)正常的細胞活動:有的細胞有正常的自噬行為或其他膜泡活動,無需特殊處理(如Caco-2細胞);
2)血清不適應(yīng)、培養(yǎng)基成分改變、換液不及時等造成細胞營養(yǎng)不良:可通過更換更合適的血清或及時換液等方法解決;
3)機械損傷、PH偏高或偏低等造成細胞受損:注意培養(yǎng)條件及操作手法。